hcg+ßirma KIP0981 KIP0984 DIAsource ImmunoAssays S.A. Rue de l'industrie, 8 B1400 Nivelles Belgium
: 090422/1
en Read entire protocol before use. hcg+β IRMA I. INTENDED USE Immunoradiometric assay for the in vitro quantitative measurement of human chorionic gonadotropin in serum and plasma. This kit is not intended to be used for the risk evaluation of trisomy 21. II. GENERAL INFORMATION A. Proprietary name : DIAsource hcg+β IRMA kit B. Catalog number : KIP0981 : 96 tests KIP0984 : 4 x 96 tests C. Manufactured by : DIAsource ImmunoAssays S.A. Rue de l'industrie, 8, B1400 Nivelles, Belgium. For technical assistance or ordering information contact : Tel : +32 (0)67 88.99.99 Fax : +32 (0)67 88.99.96 III. CLINICAL BACKGROUND A. Biological activities hcg is a glycoprotein synthesised by the syncytiotrophoblast of the placenta throughout pregnancy. hcgmolecular weight 37.9 kda comprises two subunits. The hcg α subunit molecular weight 14.9 Kda is chemically similar to the α subunits of FSH, LH and TSH hormones. The hcg β subunit molecular weight 23.0 kda has a structure similar to that of the LH β subunit, differing by only a few epitopes. hcg has biological characteristics similar to LH. During pregnancy, hcg stimulates the remaining corpus luteum and the placental tissue to secrete the various steroid hormones. In addition to its stimulating action on the luteal and placental tissue, hcg, by crossing the placenta, is essential to differentiate the genital tractus of the fetus, which occurs around the 7th week of pregnancy. B. Clinical application of hcg+β IRMA Diagnostic and monitoring test in pregnancy hcg and its free subunits α and β appear in the serum and urine of pregnant women about 9 days following ovulation. The hcg level then increases rapidly to reach a peak between the 8th and the 12th week. Tumour marker test in trophoblastic tumours Hydatiform moles and choriocarcinomas may secrete large amounts of native hcg and its two free subunits α and β into the peripheral blood circulation. Tumour marker test in nontrophoblastic cancers 10 to 15 % of the breast, lung, and digestive tract cancers release hcg and/or either of its two constitutive subunits α and β.
IV. PRINCIPLES OF THE METHOD The DIAsource hcg+β IRMA is an immunoradiometric assay based on coatedtube separation in which several monoclonal antibodies directed against distinct epitopes of hcg have been used. Mabs 1 the capture antibodies are attached to the lower and inner surface of the plastic tube. Calibrators or samples added to the tubes will at first show low affinity for Mabs 1. Addition of Mabs 2, the signal antibody labelled with 125 I, will complete the system and trigger the immunological reaction. After washing, the remaining radioactivity bound to the tube reflects the antigen concentration. V. REAGENTS PROVIDED Reagents Anti hcg+β 125 I (monoclonal antibodies) in TRIS Buffer with bovine serum albumin, sodium azide (< 0.1 %) and inert red dye Calibrators 16 in bovine serum and thymol (see exact value on vial labels) Calibrator 0 in bovine serum and azide (0,5 %) WASH SOLN CONC Wash solution (TRISHCl) Controls 1 and 2 in human serum with thymol Quantity 96 tests Quantity 4x96 tests Colour Code Reconstitution 2 x 48 8 x 48 grey Ready for use 1 vial 5.5 ml 450 kbq 6 vials lyophil. 3 vials 1 vial 2 vials lyophil. 4 vials 5.5 ml 4 x 450 kbq 2 x 6 vials lyophil. 8 vials 3 vials 2 x 2 vials lyophil red yellow yellow brown silver Ready for use Add 0.5 ml distilled water Ready for use Dilute 70x with distilled water (use a magnetic stirrer). Add 0.5 ml distilled water Note: Also use the content of the zero calibrator for dilutions of samples. 1 miu of the calibrator preparation is equivalent to 1 miu of 4 th IS 75/589 VI. SUPPLIES NOT PROVIDED The following material is required but not provided in the kit : 1. Distilled water 2. Pipettes for delivery of: 50 μl and 500 μl (the use of accurate pipettes with disposable plastic tips is recommended) 3. 5 ml automatic syringe (Cornwall type) for washing 4. Aspiration system (optional) 5. Vortex mixer 6. Magnetic stirrer 7. Tube shaker (400 rpm) 8. Any gamma counter capable of measuring 125 I may be used (minimal yield 70%). VII. Tubes coated with anti hcg+β (monoclonal antibodies) CAL CAL CONTROL 125 I N 0 N REAGENT PREPARATION 1. Calibrators 16: Reconstitute the calibrators with 0.5 ml distilled water. 2. Controls : Reconstitute the controls with 0.5 ml distilled water. 3. Wash solution : Prepare an adequate volume of Working Wash Solution by adding 69 volumes of distilled water to 1 volume of wash solution (70x). Use a magnetic stirrer to homogenize. Discard unused Working Wash Solution at the end of the day. VIII. STORAGE AND EXPIRATION DATING OF REAGENTS Before opening or reconstitution, all kit components are stable until the expiry date, indicated on the label, if kept at 2 to 8 C. After reconstitution, calibrators and controls are stable for 7 days at 28 C. For longer storage periods, aliquots should be made and kept at 20 C for 3 months. Avoid subsequent freezethaw cycles. Freshly prepared Working Wash solution should be used on the same day. After its first use, tracer is stable until expiry date, if kept in the original wellclosed vial at 2 to 8 C. Alterations in physical appearance of kit reagents may indicate instability or deterioration. IX. SPECIMEN COLLECTION AND PREPARATION. Serum or plasma samples must be kept at 28 C.. If the test is not run within 24h., storage at 20 C is recommended. Avoid subsequent freezethaw cycles.. Serum and heparinized or EDTA plasma provide similar results. y(serum) = 1.03x (HEP. plasma) + 0.07 r = 0.99 n = 30 y(serum) = 1.00x (EDTA plasma) 0.47 r = 0.99 n = 30 X. PROCEDURE A. Handling notes Do not use the kit or components beyond expiration date. Do not mix materials from different kit lots. Bring all the reagents to room temperature prior to use. Thoroughly mix all reagents and samples by gentle agitation or swirling. In order to avoid crosscontamination, use a clean disposable pipette tip for the addition of each reagent and sample. High precision pipettes or automated pipetting equipment will improve the precision. Respect the incubation times. Prepare a calibrator curve for each run, do not use data from previous runs. B. Procedure 1. Label coated tubes in duplicate for each calibrator, control, specimen. For the determination of the total activity label two plain plastic tubes. 2. Briefly vortex calibrators, controls, specimens and dispense 50 μl of each into the respective tubes. 3. Dispense 50 μl of antihcg+β 125 I tracer to all tubes, including the uncoated tubes for total counts. 4. Shake the rack containing the tubes gently by hand to liberate any trapped bubbles. 5. Incubate for 30 min. at room temperature on a tube shaker (400 rpm). Respect carefully the incubation time. 6. Aspirate (or decant) the content of each tube (except total counts). Be sure that the plastic tip of the aspirator reaches the bottom of the coatedtube in order to remove all the liquid. 7. Wash tubes with 2 ml Working Wash solution (except total counts). Avoid foaming during the addition of the Working Wash solution. 8. Aspirate (or decant) the content of each tube (except total counts). 9. Wash tubes again with 2 ml Wash solution (except total counts) and aspirate (or decant). 10. After the last washing, let the tubes stand upright for two minutes and aspirate the remaining drop of liquid. 11. Count tubes in a gamma counter for 60 seconds. XI. CALCULATION OF RESULTS 1. Calculate the mean of duplicate determinations. 2. On semi logarithmic or linear graph paper plot the c.p.m. (ordinate) for each calibrator against the corresponding concentration of hcg+β (abscissa) and draw a calibration curve through the calibrator points, reject the obvious outliers. 3. Read the concentration for each control and sample by interpolation on the calibration curve. 4. Computer assisted data reduction will simplify these calculations. If automatic result processing is used, a 4parameter logistic function curve fitting is recommended. XII. TYPICAL DATA The following data are for illustration only and should never be used in place of the real time calibrator curve. hcg+β IRMA cpm B/T (%) Total count 293692 Calibrator 0.0 miu/ml 5.5 miu/ml 16.6 miu/ml 54.0 miu/ml 153.0 miu/ml 307.0 miu/ml 585.0 miu/ml 194 1127 2496 8095 25435 49646 93037 0.07 0.38 0.85 2.76 8.66 16.90 31.68
XIII. PERFORMANCE AND LIMITATIONS A. Detection Limit Twenty zero standards were assayed along with a set of other calibrators. The sensitivity, defined as the apparent concentration two standard deviations above the average counts at zero binding, was 1.6 mu/ml. B. Specificity Crossreactive hormones were added to a low hcg+β value serum and to a high value calibrator (150 miu/ml). The apparent hcg+β response was measured. E. Time delay between last calibrator and sample dispensing As shown hereafter, assay results remain accurate even when a sample is dispensed 30 minutes after the calibrator has been added to the coated tubes. Serum 1 Serum 2 31.2 144.1 TIME DELAY 0' 10' 20' 30' 31.1 142.4 30.9 140.5 31.4 143.5 Added hormones CAL 1 Observed hcg values CAL 2 Observed hcg values F. Hook effect FSH LH TSH αhcg βhcg 250 miu/ml 250 miu/ml 250 μiu/ml 34000 fmol/ml 1000 fmol/ml 9.8 miu/ml 11.3 miu/ml 10.9 miu/ml 10.3 miu/ml 11.0 miu/ml 361.0 miu/ml 284 miu/ml 292 miu/ml 262 miu/ml 290 miu/ml 252 miu/ml 699 miu/ml This demonstrates that the hcg+βirma does not cross react with FSH, LH, TSH, αhcg and presents a 100 % crossreaction with the free βchain of hcg. Note : Using the following molecular weights 37.9 kda (hcg), 23.0 kda (βhcg) and 14.9 kda (αhcg), the molar equivalents are : hcg : 1000 fmol = 37.9 ng 325 miu 1st IRP 75/537 βhcg : 1000 fmol = 23.0 ng αhcg : 1000 fmol = 14.9 ng C. Precision INTRA ASSAY Serum N <X> S.D. CV (%) INTER ASSAY Serum N <X> S.D. CV (%) A Hook effect can be observed above 150000 miu/ml. Samples from pregnant women can yield such high concentrations. Therefore, it is advisable, in cases where an accurate quantitative result of the hcg concentration should be obtained (e.g. follow up of pregnancies), to test 3 dilutions as indicated in the scheme below. A: undiluted B: 17x diluted (25 µl of A + 400 µl zero calibrator) C: 289x diluted (25 µl of B + 400 µl zero calibrator) Screening for pregnancies should be tested undiluted. XIV. INTERNAL QUALITY CONTROL If the results obtained for Control 1 and/or Control 2 are not within the range specified on the vial label, the results cannot be used unless a satisfactory explanation for the discrepancy has been given. If desirable, each laboratory can make its own pools of control samples, which should be kept frozen in aliquots. Do not freezethaw more than twice. Acceptance criteria for the difference between the duplicate results of the samples should rely on Good Laboratory Practises A B 20 20 D. Accuracy Sample 67.3 ± 1.2 245.9 ± 3.0 Serum 1 50.0 100.0 200.0 400.0 Added hcg 1.8 1.2 C D RECOVERY TEST Recovered 52.1 101.7 209.0 417.1 DILUTION TEST 10 10 Sample Dilution Theoretical Concent. Serum 1 1/1 1/2 1/4 1/8 1/16 1/32 1/64 1/128 Samples were diluted with zero calibrator. 563.6 281.8 140.9 70.5 35.2 17.6 8.8 4.4 35.2 ± 2.2 149.6 ± 12.6 Recovery (%) 102 6.2 8.4 Measured Concent. 563.6 260.2 126.4 62.6 34.1 18.1 8.7 4.8 XV. REFERENCE INTERVALS The values provided below are given only for guidance; each laboratory should establish its own normal range of values. Pregnancy cutoff: The cutoff for pregnancy determination, defined as the apparent concentration three standard deviations above the average counts of 97 samples from nonpregnant women, was 4.6 miu/ml. It is recommended to retest samples between the cutoff and 10 miu/ml. XVI. PRECAUTIONS AND WARNINGS Safety For in vitro diagnostic use only. This kit contains 125 I (halflife: 60 days),emitting ionizing X (28 kev) and γ (35.5 kev) radiations. This radioactive product can be transferred to and used only by authorized persons; purchase, storage, use and exchange of radioactive products are subject to the legislation of the end user's country. In no case the product must be administered to humans or animals. All radioactive handling should be executed in a designated area, away from regular passage. A log book for receipt and storage of radioactive materials must be kept in the lab. Laboratory equipment and glassware, which could be contaminated with radioactive substances should be segregated to prevent cross contamination of different radioisotopes. Any radioactive spills must be cleaned immediately in accordance with the radiosafety procedures. The radioactive waste must be disposed of following the local regulations and guidelines of the authorities holding jurisdiction over the laboratory. Adherence to the basic rules of radiation safety provides adequate protection. The human blood components included in this kit have been tested by European approved and/or FDA approved methods and found negative for HBsAg, anti HCV, antihiv1 and 2. No known method can offer complete assurance that human blood derivatives will not transmit hepatitis, AIDS or other infections. Therefore, handling of reagents, serum or plasma specimens should be in accordance with local safety procedures. All animal products and derivatives have been collected from healthy animals. Bovine components originate from countries where BSE has not been reported. Nevertheless, components containing animal substances should be treated as potentially infectious.
Avoid any skin contact with reagents (sodium azide as preservative). Azide in this kit may react with lead and copper in the plumbing and in this way form highly explosive metal azides. During the washing step, flush the drain with a large amount of water to prevent azide buildup. Do not smoke, drink, eat or apply cosmetics in the working area. Do not pipette by mouth. Use protective clothing and disposable gloves. XVII. BIBLIOGRAPHY 1. BRAUNSTEIN G.D., RASOR J., ADLER D., DANZER H., WADE H.E., (1976) Serum chorionic gonadotropin levels throughout normal pregnancy. Am. J. Obstet. Gynecol., 126:678. 7. MANCINI G. et al., (1992) hcg, AFP and V E 3 pattern in the 1420th weeks of Down's syndrome pregnancies. Prenatal Diagnost., 12(7):61924. 8. WHITEHEAD N. et al., (1993) Elevated material serum human chorionic gonadotropin increases the chance of adverse pregnancy outcome. Am. J. Obstet. Gynecol., 169(5):135960. XVIII. SUMMARY OF THE PROTOCOL 2. CHEN F., SETSUKO G., YOSHIHITO F., YUTAKA T., (1987) Radioimmunoassay of the serum free βsubunit of human chorionic gonadotropin in trophoblastic disease. J. Clin. Endocrinol. Metab., 64:313. 3. DAWOOD M.Y., SASCENA B.B., LANDESMAN R., (1977) Human chorionic gonadotropin and its subunit in hydatidiform mole and choriocarcinoma. Obstet. Gynecol., 50:172. 4. HAY D.L., (1982) Chorionic gonadotropin. Clin. Biochem., 3:35. 5. GASPARD V.J., REUTER A.M., DEVILLE J.L., VRINDTS GEVAERT Y., BAGSHAWE K.D., FRANCHIMONT P., (1980) Serum concentration of human chorionic gonadotropin and its alpha and beta subunit II Trophoblastic tumours. Clin. Endocrinol. (Oxf.), 13:219. Calibrators (05) Samples Tracer Incubation Separation Washing solution Separation Washing solution Separation Counting TOTAL COUNTS ml 0.05 CALIBRATORS ml 0.05 0.05 SAMPLE(S) ml 0.05 0.05 30 minutes at room temperature with shaking at 400 rpm aspirate (or decant) 2.0 aspirate (or decant) 2.0 aspirate (or decant) Count tubes for 60 seconds 6. PIERCE J.G., PARSONS T.F., (1981) Glycoprotein hormones : structure and function. Annu. Rev. Biochem., 50:465. DIAsource Catalogue Nr : KIP0981 KIP0984 P.I. Number : 1700467/en Date of issue : 090422/1 Revision date : 20090422
fr Lire entièrement le protocole avant utilisation. hcg+βirma I. BUT DU DOSAGE Trousse de dosage radioimmunologique pour la mesure quantitative in vitro de la gonadotropine chorionique (hcg) dans le sérum et le plasma humain. Cette trousse n'est pas destinée à être utilisée pour évaluer le risque de trisomie 21. II. INFORMATIONS GENERALES A. Nom du produit : DIAsource hcg+βirma kit B. Numéro de catalogue : KIP0981 : 96 tests KIP0984 : 4 x 96 tests C. Fabriqué par : DIAsource ImmunoAssays S.A. Rue de l'industrie, 8 B1400 Nivelles Belgium. III. CONTEXTE CLINIQUE Pour une assistance technique ou une information sur une commande : Tel : +32 (0)67 88.99.99 Fax : +32 (0)67 88.99.96 A. Activités biologiques La hcg est une glycoprotéine synthétisée par le syncytiotrophoblaste du placenta lors de la grossesse. Le poids moléculaire de la hcg est 37.9 kda et comprend deux sousunités. La sousunité hcg α poids moléculaire 14.9 kda est chimiquement similaire aux sousunités α des hormones FSH, LH et TSH. La sousunité hcg β poids moléculaire 23.0 kda a une structure similaire à celle de la sousunité LH β, qui n est différente que par quelques épitopes. La hcg a des caractéristiques similaires à celles de la LH. Lors de la grossesse, la hcg stimule le corps jaune restant et le tissu placentaire à sécréter les différentes hormones stéroïdes. En plus de son action stimulante sur le tissu lutéal et placentaire, la hcg, en traversant le placenta, est essentielle pour différentier le tractus génital du fœtus, qui apparaît vers la 7ième semaine de la grossesse. B. Application clinique Test d évaluation et test diagnostique pour la grossesse La hcg et ses sousunités libres α et β apparaissent dans le sérum et l urine de femmes enceintes après environ 9 jours après l ovulation. Puis, le taux en hcg augmente rapidement pour atteindre un sommet entre la 8ième et la 12ième semaine. Test de marqueur de tumeur pour des tumeurs trophoblastiques Des môles hydatiformes et des choriocarcinomes peuvent sécréter de grandes quantités de hcg native et de ses deux sousunités libres α et β dans la circulation sanguine périphérique. Test de marqueur de tumeur pour des cancers nontrophoblastiques 10 à 15 % des cancers du sein, du poumon et de l intestin sécrètent de la hcg et/ou ses deux sousunités constitutives α et β.
IV. PRINCIPES DU DOSAGE VIII. STOCKAGE ET DATE D EXPIRATION DES REACTIFS La trousse DIAsource hcg+βirma est une trousse de dosage radioimmunologique basée sur la séparation en tube recouvert d'anticorps dans lequel différents anticorps monoclonaux, dirigés contre des épitopes distinctes de la hcg ont été utilisés. Mabs1, les anticorps de capture, sont attachés sur la surface basse et interne du tube plastic. Les calibrateurs ou les échantillons ajoutés dans les tubes présenteront dans un premier temps une faible affinité pour Mabs1. L addition de Mab2, l anticorps de détection marqué avec l 125 I, complètera le système et déclenchera la réaction immunologique. Suite au lavage, la radioactivité restante liée au tube reflètera la concentration de l antigène. V. REACTIFS FOURNIS Reactifs TRACEUR: anti hcg+β marquée à l 125 Iodine (anticorps monoclonal) dans un tampon TRIS avec de l'albumine bovine, de l azide de sodium (<0,1%) et un colorant rouge inactif Calibrateur zéro dans du sérum bovin avec de l azide (0,5 %) Calibrateur N = 1 à 6 (cfr. Valeurs exactes sur chaque flacon) dans du sérum bovin avec du thymol Solution de Lavage (TRIS HCl) Contrôles N = 1 ou 2 dans du sérum humain avec du thymol Note: VI. Tubes recouverts avec l anti hcg+β (anticorps monoclonal) WASH CAL CAL SOLN CONTROL 125 I 0 N CONC N 96 tests Kit 96 tests Kit Code Couleur Reconstitution 2 x 48 8 x 48 Gris Prêt à l emploi 1 flacon 5,5 ml 450 kbq 3 flacons 6 flacons lyophilisés 1 flacon 2 flacons lyophilisés 4 flacons 5,5 ml 4x450 kbq 8 flacons 2x6 flacons lyophilisés 3 flacons 2x2 flacons lyophilisés Rouge Jaune Jaune Brun Gris Prêt à l emploi Prêt à l emploi Ajouter 0,5 ml d eau distillée Diluer 70 x avec de l eau distillée (utiliser un agitateur magnétique). Ajouter 0,5 ml d eau distillée 1. Utiliser le calibrateur zéro pour la dilution des échantillons. 2. 1 miu de la préparation du calibrateur est équivalent à 1 miu de 4 th IS 75/589 MATERIELS NON FOURNIS Le matériel mentionné cidessous est requis mais non fourni avec la trousse: 1. Eau distillée 2. Pipettes pour distribuer: 50 μl et 500 μl (l utilisation de pipettes précises et de pointes en plastique est recommandée) 3. Agitateur vortex 4. Agitateur magnétique 5. Agitateur de tubes (400 rpm) 6. Seringue automatique de 5 ml (type Cornwall) pour les lavages 7. Système d aspiration (optionnel) 8. Tout compteur gamma capable de mesurer l 125 I peut être utilisé (rendement minimum 70%). Avant l ouverture ou la reconstitution, tous les composants de la trousse sont stables jusqu à la date d expiration, indiquée sur l étiquette, si la trousse est conservée entre 2 et 8 C. Après reconstitution, les calibrateurs et les contrôles sont stables pendant 7 jours entre 2 et 8 C. Pour de plus longues périodes de stockage, des aliquots devront être réalisés et ceuxci seront gardés à 20 C pendant 3 mois au maximum. Eviter des cycles de congélation et décongélation successifs. La Solution de Lavage préparée doit être utilisée le jour même. Après la première utilisation, le traceur est stable jusqu à la date d expiration, si celuici est conservé entre 2 et 8 C dans le flacon d origine correctement fermé. Des altérations dans l apparence physique des réactifs de la trousse peuvent indiquer une instabilité ou une détérioration. IX. PREPARATION ET STABILITE DE L ECHANTILLON Les échantillons de sérum ou de plasma doivent être gardés entre 2 et 8 C. Si le test n est pas réalisé dans les 24 heures, un stockage à 20 C est recommandé. Eviter des cycles de congélation et décongélation successifs. Le sérum, le plasma hépariné ou le plasma traité avec l EDTA donne des résultats similaires y(sérum) = 1,03x (HEP. Plasma) + 0,07 r = 0,99 n = 30 y(sérum) = 1,00x (EDTA Plasma) 0,47 r = 0,99 n = 30 X. MODE OPERATOIRE A. Notes de manipulation Ne pas utiliser la trousse ou ses composants après avoir dépassé la date d expiration. Ne pas mélanger du matériel provenant de trousses de lots différents. Mettre tous les réactifs à température ambiante avant utilisation. Mélangez tous les réactifs et les échantillons sous agitation douce. Pour éviter toute contamination croisée, utiliser une nouvelle pointe de pipette pour l addition de chaque réactif et échantillon. Des pipettes de haute précision ou un équipement de pipetage automatique permettent d augmenter la précision. Respecter les temps d incubation. Préparer une courbe d étalonnage pour chaque nouvelle série d expériences, ne pas utiliser les données d expériences précédentes. B. Mode opératoire 1. Identifier les tubes recouverts fournis dans la trousse, en double pour chaque calibrateur, échantillon, contrôle. Pour la détermination de l activité totale, identifier 2 tubes non recouverts d anticorps. 2. Agiter au vortex brièvement les calibrateurs, les contrôles et les échantillons. Puis distribuer 50 μl de chacun d eux dans leurs tubes respectifs. 3. Distribuer 50 μl de traceur dans chaque tube. 4. Agiter légèrement le portoir de tube manuellement pour libérer toute bulle d air emprisonnée. 5. Incuber pendant 30 minutes à température ambiante sous agitation continue (400 rpm). Respecter strictement le délai d incubation. 6. Aspirer (ou décanter) le contenu de chaque tube (à l exception des tubes utilisés pour la détermination de l activité totale). Assurezvous que la pointe utilisée pour aspirer le liquide des tubes atteint le fond de chacun d eux pour éliminer toute trace de liquide. 7. Laver les tubes avec 2 ml de Solution de Lavage (à l exception des tubes utilisés pour la détermination de l activité totale) et aspirer. Eviter la formation de mousse pendant l addition de la Solution de Lavage. 8. Aspirer (ou décanter) le contenu de chaque tube (à l exception des tubes utilisés pour la détermination de l activité totale). 9. Laver les tubes à nouveau avec 2 ml de Solution de Lavage (à l exception des tubes utilisés pour la détermination de l activité totale) et aspirer (ou décanter). 10. Après le dernier lavage, laisser les tubes droits pendant 2 minutes et aspirer (ou décanter) le reste de liquide. 11. Placer les tubes dans un compteur gamma pendant 60 secondes pour quantifier la radioactivité. VII. PREPARATION DES REACTIFS XI. CALCUL DES RESULTATS A. Calibrateurs 16: Reconstituer les calibrateurs avec 0,5 ml d eau distillée. B. Contrôles : Reconstituer les contrôles avec 0,5 ml d eau distillée. C. Solution de Lavage : Préparer un volume adéquat de Solution de Lavage en ajoutant 69 volumes d eau distillée à 1 volume de Solution de Lavage (70x). Utiliser un agitateur magnétique pour homogénéiser. Eliminer la Solution de Lavage non utilisée à la fin de la journée. 1. Calculer la moyenne de chaque détermination réalisée en double. 2. Dessiner sur un graphique linéaire ou semilogarithmique les cpm (ordonnées) pour chaque calibrateur contre la concentration correspondante en hcg+β (abscisses) et dessiner une courbe de calibration à l aide des points de calibration, écarter les valeurs aberrantes.
3. Lire la concentration pour chaque contrôle et échantillon par interpolation sur la courbe de calibration. 4. L analyse informatique des données simplifiera les calculs. Si un système d analyse de traitement informatique des données est utilisé, il est recommandé d utiliser la fonction «4 paramètres» du lissage de courbes. D. Exactitude Echantillon TEST DE RECUPERATION hcg+β ajoutée hcg+β récupérée Récupération (%) XII. DONNEES TYPES Les données représentées cidessous sont fournies pour information et ne peuvent jamais être utilisées à la place d une courbe d étalonnage. Sérum 1 50,0 100,0 200,0 400,0 52,1 101,7 209,0 417,1 102 hcg+β IRMA cpm B/T (%) Activité totale 293692 Calibrateur 0,0 miu/ml 5,5 miu/ml 16,6 miu/ml 54,0 miu/ml 153,0 miu/ml 307,0 miu/ml 585,0 miu/ml 194 1127 2496 8095 25435 49646 93037 0,07 0,38 0,85 2,76 8,66 16,90 31,68 TEST DE DILUTION Echantillon Dilution Concent. théorique Sérum 1 1/1 1/2 1/4 1/8 1/16 1/32 1/64 1/128 563,6 281,8 140,9 70,5 35,2 17,6 8,8 4,4 Concent. Mesurée 563,6 260,2 126,4 62,6 34,1 18,1 8,7 4,8 XIII. PERFORMANCE ET LIMITES A. Sensibilité Vingt calibrateurs zéro ont été testés en parallèle avec un assortiment d autres calibrateurs. La limite de détection, définie comme la concentration apparente située 2 déviations standards audessus de la moyenne déterminée à la fixation zéro, était de 1,6 miu/ml. B. Spécificité Des hormones crossréactives ont été ajoutées à un sérum à valeur hcg+β basse et à un calibrateur à valeur élevée (150 miu/ml). La réponse hcg+β a été mesurée. FSH LH TSH αhcg βhcg Hormones ajoutées CAL 1 250 miu/ml 250 miu/ml 250 μiu/ml 34000 fmol/ml 1000 fmol/ml Valeurs hcg observées 9,8 miu/ml 11,3 miu/ml 10,9 miu/ml 10,3 miu/ml 11,0 miu/ml 361,0 miu/ml CAL 2 Valeurs hcg observées 284 miu/ml 292 miu/ml 262 miu/ml 290 miu/ml 252 miu/ml 699 miu/ml Ceci démontre que la hcg+βirma ne présente pas de réaction croisée avec FSH, LH, TSH, αhcg et présente une réaction croisée de 100 % avec la chaîne β libre de la hcg. Note : En utilisant les poids moléculaires suivants 37.9 kda (hcg), 23.0 kda (βhcg) et 14.9 kda (αhcg), les équivalents molaires sont : hcg : 1000 fmol = 37.9 ng 325 miu 1st IRP 75/537 βhcg : 1000 fmol = 23.0 ng αhcg : 1000 fmol = 14.9 ng C. Précision INTRAESSAI INTERESSAI L échantillon a été dilué avec le calibrateur zéro. E. Délai entre la distribution du dernier calibrateur et celle de l échantillon Comme montré cidessous, les résultats d un essai restent précis même quand un échantillon est distribué 30 minutes après que le calibrateur ait été ajouté aux tubes avec l anticorps. Serum 1 Serum 2 31,2 144,1 DELAI 0' 10' 20' 30' 31,1 142,4 30,9 140,5 31,4 143,5 F. Effet crochet Un effet crochet peut être observé audessus de 150000 miu/ml. Les échantillons de femmes enceintes peuvent comprendre ces concentrations. Voilà pourquoi il est recommandé, dans les cas où un résultat quantitatif précis de la concentration en hcg doit être obtenu (p.e. observation de grossesses), de tester 3 dilutions comme indiqué dans le schéma cidessous. A: Non dilué B: Dilué 17x (25 µl de A + 400 µl du calibrateur zéro) C: Dilué 289x (25 µl de B + 400 µl du calibrateur zéro) Les tests de grossesse doivent être testés non dilués. XIV. CONTROLE DE QUALITE INTERNE Si les résultats obtenus pour le(s) contrôle(s) 1 et/ou 2 ne sont pas dans l intervalle spécifié sur l étiquette du flacon, les résultats ne peuvent pas être utilisés à moins que l'on ait donné une explication satisfaisante de la nonconformité. Chaque laboratoire est libre de faire ses propres stocks d échantillons contrôles, lesquels doivent être congelés aliquotés. Les critères d acceptation pour les écarts des valeurs in duplo des échantillons doivent être basés sur les pratiques de laboratoire courantes. Sérum N <X> ± SD CV (%) Sérum N <X> ± SD CV (%) A B 20 20 67,3 ± 1,2 245,9 ± 3,0 1,8 1,2 C D 10 10 35,2 ± 2,2 149,6 ± 12,6 6,2 8,4 SD : Déviation Standard; CV: Coéfficient de variation
XV. VALEURS ATTENDUES Les valeurs sont données à titre d information; chaque laboratoire doit établir ses propres écarts de valeurs. Limite pour la grossesse: La limite pour la détermination de la grossesse, définie comme la concentration apparente trois déviations standards audessus des comptages moyens de 96 échantillons de femmes non enceintes, était 4,6 miu/ml. Il est recommandé de retester les échantillons compris entre le cutoff et 10 miu/ml. XVI. PRECAUTIONS ET AVERTISSEMENTS Sécurité Pour utilisation en diagnostic in vitro uniquement. Cette trousse contient de l 125 I (demivie: 60 jours), une matière radioactive émettant des rayonnements ionisants X (28 kev) et γ (35.5 kev). Ce produit radioactif peut uniquement être reçu, acheté, possédé ou utilisé par des personnes autorisées; l achat, le stockage, l utilisation et l échange de produits radioactifs sont soumis à la législation du pays de l'utilisateur final. Ce produit ne peut en aucun cas être administré à l homme ou aux animaux. Toutes les manipulations radioactives doivent être exécutées dans un secteur désigné, éloigné de tout passage. Un journal de réception et de stockage des matières radioactives doit être tenu à jour dans le laboratoire. L'équipement de laboratoire et la verrerie, qui pourrait être contaminée avec des substances radioactives, doivent être isolés afin d éviter la contamination croisée de plusieurs isotopes. Toute contamination ou perte de substance radioactive doit être réglée conformément aux procédures de radio sécurité. Les déchets radioactifs doivent être placés de manière à respecter les réglementations en vigueur. L'adhésion aux règles de base de sécurité concernant les radiations procure une protection adéquate. Les composants de sang humain inclus dans ce kit ont été évalués par des méthodes approuvées par l Europe et/ou la FDA et trouvés négatifs pour HBsAg, l antihcv, l antihiv1 et 2. Aucune méthode connue ne peut offrir l'assurance complète que des dérivés de sang humain ne transmettront pas d hépatite, le sida ou toute autre infection. Donc, le traitement des réactifs, du sérum ou des échantillons de plasma devront être conformes aux procédures locales de sécurité. Tous les produits animaux et leurs dérivés ont été collectés d'animaux sains. Les composants bovins proviennent de pays où l ESB n'a pas été détectée. Néanmoins, les composants contenant des substances animales devront être traités comme potentiellement infectieux. L azide de sodium est nocif s il est inhalé, avalé ou en contact avec la peau (l azide de sodium est utilisé comme agent conservateur). L azide dans cette trousse pouvant réagir avec le plomb et le cuivre dans les canalisations et donner des composés explosifs, il est nécessaire de nettoyer abondamment à l eau le matériel utilisé. Ne pas fumer, ni boire, ni manger ni appliquer de produits cosmétiques dans les laboratoires où des produits radioactifs sont utilisés. Ne pas pipeter avec la bouche. Utiliser des vêtements protecteurs et des gants à usage unique. 3. DAWOOD M.Y., SASCENA B.B., LANDESMAN R., (1977) Human chorionic gonadotropin and its subunit in hydatidiform mole and choriocarcinoma. Obstet. Gynecol., 50:172. 4. HAY D.L., (1982) Chorionic gonadotropin. Clin. Biochem., 3:35. 5. GASPARD V.J., REUTER A.M., DEVILLE J.L., VRINDTS GEVAERT Y., BAGSHAWE K.D., FRANCHIMONT P., (1980) Serum concentration of human chorionic gonadotropin and its alpha and beta subunit II Trophoblastic tumours. Clin. Endocrinol. (Oxf.), 13:219. 6. PIERCE J.G., PARSONS T.F., (1981) Glycoprotein hormones : structure and function. Annu. Rev. Biochem., 50:465. 7. MANCINI G. et al., (1992) hcg, AFP and V E 3 pattern in the 1420th weeks of Down's syndrome pregnancies. Prenatal Diagnost., 12(7):61924. 8. WHITEHEAD N. et al., (1993) Elevated material serum human chorionic gonadotropin increases the chance of adverse pregnancy outcome. Am. J. Obstet. Gynecol., 169(5):135960. XVIII. RESUME DU PROTOCOLE Calibrateurs (06) Echantillons, Contrôles Traceur Incubation Séparation Solution de Lavage Séparation Solution de Lavage Séparation Comptage ACTIVITE TOTALE (ml) CALIBRA TEURS (ml) ECHANTIL LON(S) CONTROLES (ml) 30 minutes à température ambiante sous agitation continue (400 rpm) Aspiration 2,0 Aspiration 2,0 Aspiration Temps de comptage des tubes: 60 secondes XVII. BIBLIOGRAPHIE 1. BRAUNSTEIN G.D., RASOR J., ADLER D., DANZER H., WADE H.E., (1976) Serum chorionic gonadotropin levels throughout normal pregnancy. Am. J. Obstet. Gynecol., 126:678. 2. CHEN F., SETSUKO G., YOSHIHITO F., YUTAKA T., (1987) Radioimmunoassay of the serum free βsubunit of human chorionic gonadotropin in trophoblastic disease. J. Clin. Endocrinol. Metab., 64:313. DIAsource Catalogue Nr : KIP0981 KIP0984 P.I. Number : 1700467/fr Revision nr : 090422/1 Date de revision : 20090422
de Vor Gebrauch des Kits lesen Sie bitte diese Packungsbeilage. hcg+βirma I. VERWENDUNGSZWECK Ein RadioImmunoassay für die quantitative in vitro Bestimmung von humanem Choriongonadotropin (hcg) in Serum und Plasma. Dieser Kit ist nicht zur Evaluierung des Risikos auf Trisomie 21 bestimmt. II. ALLGEMEINE INFORMATION A. Handelsbezeichnung : DIAsource hcg+βirma Kit B. Katalognummer : KIP0981 : 96 Tests KIP0984: 4 x 96 Tests C. Hergestellt von: DIAsource ImmunoAssays S.A. Rue de l'industrie, 8, B1400 Nivelles, Belgien. Für technische Unterstützung oder Bestellungen wenden Sie sich bitte an: Tel : +32 (0)67 88.99.99 Fax : +32 (0)67 88.99.96 Für Deutschland : Kostenfreie Rufnummer : 0800 1 00 85 74 Kostenfreie Faxnummer : 0800 1 00 85 75 Email Ordering : ordering@diasource.be III. KLINISCHER HINTERGRUND A. Biologische Aktivität hcg ist ein Glykoprotein, das während der gesamten Schwangerschaft durch die Synzytiotrophoblasten der Plazenta gebildet wird. hcg Molekulargewicht 37.9 kda umfasst zwei Untereinheiten. Die hcgα Untereinheit Molekulargewicht 14.9 kda ist chemisch den α Untereinheiten der Hormone FSH, LH und TSH ähnlich. Die hcgβuntereinheit Molekulargewicht 23.0 kda hat eine Struktur, die jener der LHβ Untereinheit ähnelt und sich nur in einigen Epitopen unterscheidet. hcg hat biologische Eigenschaften, die jenen von LH ähneln. Während der Schwangerschaft stimuliert hcg das verbleibende Corpus luteum und das Plazentagewebe dazu, die verschiedenen Steroidhormone zu sezernieren. Neben der Stimulierung des Luteal und Plazentagewebes ist hcg, das die Plazenta durchquert, entscheidend zur Differenzierung des Tractus genitalis des Fötus, die um die 7. Schwangerschaftswoche stattfindet. B. Klinische Anwendung Diagnostischer und Kontrolltest während der Schwangerschaft hcg und seine freien Untereinheiten α und β scheinen in Serum und Harn schwangerer Frauen etwa 9 Tage nach der Ovulation auf. Der hcgspiegel steigt dann rasch an, um zwischen der 8. und 12. Woche eine Spitze zu erreichen. Tumormarkertest bei trophoblastischen Tumoren Acephalocystes racemosae und Choriokarzinome können große Mengen an nativem hcg und den beiden freien Untereinheiten α und β in den peripheren Blutkreislauf sezernieren. Tumormarkertest bei nicht trophoblastischen Krebserkrankungen 10 bis 15 % der Brust, Lungen und Verdauungstraktkrebs geben hcg und/oder eine der beiden Untereinheiten α und β ab.
IV. GRUNDSÄTZLICHES ZUR DURCHFÜHRUNG VIII. AUFBEWAHRUNG UND LAGERUNG DER REAGENZIEN Der DIAsource hcg+ßirma ist ein immunoradiometrischer Assay in beschichteten Röhrchen, in denen einige monoklonale Antikörper verwendet wurden, die gegen bestimmte Epitopen von hcg gerichtet sind. Mabs1, die FängerAntikörper, haften an der unteren inneren Oberfläche des Plastikröhrchens. In die Röhrchen zugegebene Kalibratoren oder Proben zeigen zuerst eine niedrige Affinität zu Mabs1. Zugabe von Mab2, des mit 125 I markierten Signalantikörpers, vervollständigt das System und triggert die immunologische Reaktion. Nach dem Waschen gibt die verbleibende, an den Röhrchen haftende Radioaktivität die Antigenkonzentration wieder. V. MITGELIEFERTE REAGENZIEN Vor dem Öffnen oder der Rekonstitution sind die Reagenzien des Kits bis zum laufdatum (Angaben auf Etikett) bei Lagerung bei 2 C bis 8 C stabil. Nach der Rekonstitution sind die Kalibratoren und Kontrollen bei 2 C bis 8 C 7 Tage stabil. Aliquots müssen bei längerer Aufbewahrung bei 20 C eingefroren werden und sind dann max. 3 Monate stabil. Vermeiden Sie wiederholtes Einfrieren und Auftauen. Frisch zubereitete Waschlösung sollte am selben Tag benutzt werden. Nach der ersten Benutzung ist der Tracer bei Aufbewahrung im Originalgefäß und bei 2 bis 8 C bis zum laufdatum stabil. Veränderungen im Aussehen der Kitkomponenten können ein Anzeichen für Instabilität oder Zerfall sein. Reagenzien Mit anti hcg+βbeschichtete Röhrchen (monoklonale Antikörper) TRACER: 125 Iodmarkiertes AntihCG+ß (monoklonale Antikörper) in TRIS Puffer mit Rinderserumalbumin, Azid (<0,1%) und inertem roten Farbstoff CAL NullKalibrator in Rinderserum mit Azid (0,5%) CAL 125 I Kalibrator N = 1 bis 6 (genaue Werte auf Gefäßetiketten) in Rinderserum mit Thymol 0 N 96 Test Kit 4 x 96 Test Kit Farbcode Rekonstitution 2 x 48 8 x 48 Grau gebrauchsfertig 1 Gefäß 5,5 ml 450 kbq 3 Gefäße 6 Gefäße lyophil. 4 Gefäße 5,5 ml 4x450 kbq 8 Gefäße 2 x 6 Gefäße lyophil. Rot Gelb Gelb gebrauchsfertig gebrauchsfertig 0,5 ml dest. Wasser zugeben IX. PROBENSAMMLUNG UND VORBEREITUNG Serum oder Plasmaproben müssen bei 28 C aufbewahrt werden. Falls der Test nicht innerhalb von 24 Std. durchgeführt wird, ist die Aufbewahrung bei 20 C erforderlich. Vermeiden Sie wiederholtes Einfrieren und Auftauen. Serumproben, EDTA oder heparinisiertes Plasma liefern ähnliche Ergebnisse. y(serum) = 1,03x (HEP. Plasma) + 0,07 r = 0,99 n = 30 y(serum) = 1,00x (EDTA Plasma) 0,47 r = 0,99 n = 30 X. DURCHFÜHRUNG A. Bemerkungen zur Durchführung Verwenden Sie den Kit oder dessen Komponenten nicht nach laufdatum. Vermischen Sie Materialien von unterschiedlichen Kit Chargen nicht. Bringen Sie alle Reagenzien vor der Verwendung auf Raumtemperatur. Mischen Sie alle Reagenzien und Proben gründlich durch sanftes Schütteln oder Rühren. Verwenden Sie saubere WegwerfPipettenspitzen, um Kreuzkontamination zu vermeiden. Präzisionspipetten oder ein automatisches Pipettiersystem erhöhen die Präzision. Achten Sie auf die Einhaltung der Inkubationszeiten. Erstellen Sie für jeden Durchlauf eine Standardkurve, verwenden Sie nicht die Daten von früheren Durchläufen. Waschlösung (TRIS HCl) Kontrollen N = 1 oder 2 Humanserum mit Thymol Bemerkung: VI. 1 Gefäß 2 Gefäße lyophil. 3 Gefäße 2 x 2 Gefäße lyophil. Braun Silber 70 x mit dest. Wasser verdünnen (Magnetrührer benutzen). 0,5 ml dest. Wasser zugeben 1. Benutzen Sie NullKalibrator zur Probenverdünnung. 2. 1 miu der Kalibratorzubereitung ist äquivalent zu 1mIU 4 th IS 75/589 ZUSÄTZLICH BENÖTIGTES MATERIAL Folgendes Material wird benötigt, aber nicht mit dem Kit mitgeliefert: 1. Dest. Wasser 2. Pipetten: 50 μl und 500 μl (Verwendung von Präzisionspipetten mit WegwerfPlastikspitzen wird empfohlen). 3. 5 ml automatische Spritze (Cornwall Typ) zum Waschen. 4. saugsystem (optional). 5. Vortex Mixer 6. Magnetrührer 7. RöhrchenSchüttler (400 rpm) 8. Jegl. GammaCounter, der 125 I messen kann, kann verwendet werden. (minimal Yield 70%) VII. WASH SOLN CONTROL N CONC VORBEREITUNG DER REAGENZIEN A. Kalibratoren 16: Rekonstituieren Sie die Kalibratoren mit 0,5 ml dest. Wasser. B. Kontrollen : Rekonstituieren Sie die Kontrollen mit 0,5 ml dest. Wasser. C. Waschlösung: Bereiten Sie ein angemessenes Volumen Waschlösung aus einem Anteil Waschlösung (70 x) mit 69 Anteilen dest. Wasser zu. Verwenden Sie einen Magnetrührer zum gleichmäßigen Durchmischen. Werfen Sie die nicht benutzte Waschlösung am Ende des Tages weg. B. Durchführung 1. Beschriften Sie je 2 beschichtete Röhrchen für jeden Kalibrator, jede Probe und Kontrolle. Zur Bestimmung der Gesamtaktivität beschriften Sie 2 normale Röhrchen. 2. Vortexen Sie Kalibratoren, Proben und Kontrollen kurz und geben Sie jeweils 50 μl in ihre Röhrchen. 3. Geben Sie 50 μl des Tracers in jedes Röhrchen. 4. Schütteln Sie vorsichtig die Halterung mit den Röhrchen um Blasen zu entfernen. 5. Inkubieren Sie 30 Minuten bei Raumtemperatur, dabei schütteln (400 rpm). Inkubationszeit genauestens einhalten. 6. Saugen Sie den Inhalt jedes Röhrchens ab (oder dekantieren Sie) (außer Gesamtaktivität). Vergewissern Sie sich, dass die Plastikspitze des saugers den Boden des beschichteten Röhrchens erreicht, um die gesamte Flüssigkeit zu entfernen. 7. Waschen Sie die Röhrchen mit 2 ml Waschlösung (außer Gesamtaktivität) und saugen Sie ab (oder dekantieren Sie). Vermeiden Sie Schaumbildung bei Zugabe der Waschlösung. 8. Saugen Sie den Inhalt jeden Röhrchens (außer Gesamtaktivität) ab. 9. Waschen Sie die Röhrchen mit 2 ml Waschlösung (außer Gesamtaktivität) und saugen Sie ab (oder dekantieren Sie). 10. Lassen Sie nach dem letzten Waschen die Röhrchen 2 Minuten aufrecht stehen und saugen Sie den verbleibenden Flüssigkeitstropfen ab. 11. Werten Sie die Röhrchen in einem GammaCounter 60 Sekunden aus. XI. BERECHNUNG DER ERGEBNISSE 1. Berechnen Sie den Durchschnitt aus den Doppelbestimmungen. 2. Tragen Sie auf semilogarithmischem oder linearem Millimeterpapier den c.p.m. (Ordinate) für jeden Standard gegen die entsprechende Konzentration hcg+β (szisse) ein und zeichnen Sie eine Standardkurve durch die Standardpunkte, schließen Sie offensichtliche Ausreißer aus. 3. Berechnen Sie die Konzentration für jede Kontrolle und Probe durch Interpolation aus der Standardkurve. 4. Computergestützte Methoden können ebenfalls zur Erstellung der Kalibrationskurve verwendet werden. Falls die Ergebnisberechnung mit dem Computer durchgeführt wird, empfehlen wir die Berechnung mit einer 4 Parameter Kurvenfunktion.
XII. TYPISCHE WERTE VERDÜNNUNGSTEST Die folgenden Daten dienen nur zu Demonstrationszwecken und können nicht als Ersatz für die Echtzeitstandardkurve verwendet werden. Probe Verdünn. Theoret. Konzent. Gemess. Konzent. hcg+βirma cpm B/T (%) Gesamtaktivität 293692 Kalibrator 0,0 miu/ml 5,5 miu/ml 16,6 miu/ml 54,0 miu/ml 153,0 miu/ml 307,0 miu/ml 585,0 miu/ml 194 1127 2496 8095 25435 49646 93037 0,07 0,38 0,85 2,76 8,66 16,90 31,68 XIII. LEISTUNGSMERKMALE UND GRENZEN DER METHODIK A. Nachweisgrenze Zwanzig NullKalibratoren wurden zusammen mit einem Satz anderer Kalibratoren gemessen. Die Nachweisgrenze, definiert als die scheinbare Konzentration bei zwei Standardabweichungen über dem gemessenen Durchschnittswert bei Nullbindung, entsprach 1,6 miu/ml. B. Spezifität Kreuzreaktive Hormone wurden einem Serum mit niedrigem hcg+βwert und einem Kalibrator mit hohem Wert (150 miu/ml) zugesetzt. Die gezeigte hcg+β Reaktion wurde gemessen. FSH LH TSH αhcg βhcg Zugesetzte Hormone CAL 1 250 miu/ml 250 miu/ml 250 μiu/ml 34000 fmol/ml 1000 fmol/ml Beobachtete hcg Werte 9,8 miu/ml 11,3 miu/ml 10,9 miu/ml 10,3 miu/ml 11,0 miu/ml 361,0 miu/ml CAL 2 Beobachtete hcgwerte 284 miu/ml 292 miu/ml 262 miu/ml 290 miu/ml 252 miu/ml 699 miu/ml Das zeigt, dass der hcg+βirma keine Kreuzreaktion mit FSH, LH, TSH oder αhcg aufweist und eine 100% Kreuzreaktion mit der freien βkette des hcg aufweist. Hinweis: Mit den Molekulargewichten 37.9 kda (hcg), 23.0 kda (βhcg) und 14.9 kda (αhcg), sind die molaren Äquivalente: hcg : 1000 fmol = 37,9 ng 325 miu 1st IRP 75/537 βhcg : 1000 fmol = 23,0 ng αhcg : 1000 fmol = 14,9 ng Serum 1 1/1 1/2 1/4 1/8 1/16 1/32 1/64 1/128 563,6 281,8 140,9 70,5 35,2 17,6 8,8 4,4 Die Proben wurden mit NullKalibrator verdünnt. 563,6 260,2 126,4 62,6 34,1 18,1 8,7 4,8 E. Zeitverzögerung zwischen letzter Kalibrator und Probenzugabe Es wird im Folgenden gezeigt, dass die Genauigkeit der Tests selbst dann erhalten bleibt, wenn die Probe 30 Minuten nach Zugabe des Kalibrators in die beschichteten Röhrchen zugefügt wird. Serum 1 Serum 2 31,2 144,1 ZEITDIFFERENCE 0' 10' 20' 30' 31,1 142,4 30,9 140,5 31,4 143,5 F. HookEffekt Über 150.000 miu/ml kann ein HookEffekt beobachtet werden. Proben von schwangeren Frauen können so hohe Konzentrationen ergeben. Es wird daher empfohlen, in Fällen, in denen ein exaktes quantitatives Resultat der hcg Konzentration erreicht werden soll (z.b. Followup von Schwangerschaften), 3 Verdünnungen nach dem unten stehenden Schema zu testen. A: nicht verdünnt B: 17x verdünnt (25 µl von A + 400 µl NullKalibrator) C: 289x verdünnt (25 µl von B + 400 µl NullKalibrator) Screening für Schwangerschaften sollte nicht verdünnt durchgeführt werden. XIV. INTERNE QUALITÄTSKONTROLLE Entsprechen die IstWerte nicht den auf den Fläschchen angegebenen Soll Werten, können die Werte, ohne treffende Erklärung der weichungen, nicht weiterverarbeitet werden. Falls zusätzliche Kontrollen erwünscht sind, kann jedes Labor seinen eigenen Pool herstellen, der in Aliquots eingefroren werden sollte. Akzeptanzkriterien für die Differenz zwischen den Resultaten der Wiederholungstests anhand der Proben müssen auf Guter Laborpraxis beruhen. C. Präzision INTRA ASSAY Serum N <X> ± SD A B 20 20 67,3 ± 1,2 245,9 ± 3,0 CV (%) 1,8 1,2 INTER ASSAY Serum N <X> ± SD C D 10 10 SD : Standardabweichung; CV: Variationskoeffizient D. Genauigkeit WIEDERFINDUNGSTEST 35,2 ± 2,2 149,6 ± 12,6 CV (%) 6,2 8,4 XV. REFERENZ INTERVALLE Diese Werte sind nur Richtwerte; jedes Labor muss seinen eigenen Normalwertbereich ermitteln. SchwangerschaftsCutoffWert: Der CutoffWert für die Bestimmung einer Schwangerschaft, definiert als die deutliche Konzentration drei Standardabweichungen über den Durchschnittszählungen von 96 Proben von nicht schwangeren Frauen, betrug 4,6 miu/ml. Es wird empfohlen Proben, die zwischen dem CutoffWert und 10 miu/ml liegen, erneut zu testen. Probe Zugeg. hcg+ß Serum 1 50,0 100,0 200,0 400,0 Wiedergef. hcg+ß 52,1 101,7 209,0 417,1 Wiedergefunden (%) 102 XV. VORSICHTSMASSNAHMEN UND WARNUNGEN Sicherheit Nur für diagnostische Zwecke. Dieser Kit enthält 125 I (Halbwertzeit: 60 Tagen), das ionisierende X (28 kev) und γ (35.5 kev) Strahlungen emittiert. Dieses radioaktive Produkt kann nur an autorisierte Personen abgegeben und darf nur von diesen angewendet werden; Erwerb, Lagerung, Verwendung und Austausch radioaktiver Produkte sind Gegenstand der Gesetzgebung des Landes des jeweiligen Endverbrauchers. In keinem Fall darf das Produkt an Menschen oder Tieren angewendet werden.
Der Umgang mit radioaktiven Substanzen sollte fern von Durchgangsverkehr in einem speziell ausgewiesenen Bereich stattfinden. Ein Logbuch für Protokolle und Aufbewahrung muss im Labor sein. Die Laborausrüstung und die Glasbehälter, die mit radioaktiven Substanzen kontaminiert werden können, müssen ausgesondert werden, um Kreuzkontaminationen mit unterschiedlichen Radioisotopen zu verhindern. Verschüttete radioaktive Substanzen müssen sofort den Sicherheitsbestimmungen entsprechend entfernt werden. Radioaktive fälle müssen entsprechend den lokalen Bestimmungen und Richtlinien der für das Labor zuständigen Behörden gelagert werden. Das Einhalten der Sicherheitsbestimmungen für den Umgang mit radioaktiven Substanzen gewährleistet ausreichenden Schutz. Die menschlichen Blutkomponenten in diesem Kit wurden mit europäischen und in den USA erprobten FDAMethoden getestet, sie waren negativ für HBsAG, antihcv und antihiv 1 und 2. Keine bekannte Methode kann jedoch vollkommene Sicherheit darüber liefern, dass menschliche Blutbestandteile nicht Hepatitis, AIDS oder andere Infektionen übertragen. Deshalb sollte der Umgang mit Reagenzien, Serum oder Plasmaproben in Übereinstimmung mit den Sicherheitsbestimmungen erfolgen. Alle tierischen Produkte und deren Derivate wurden von gesunden Tieren gesammelt. Komponenten von Rindern stammen aus Ländern, in denen BSE nicht nachgewiesen wurde. Trotzdem sollten Komponenten, die tierische Substanzen enthalten, als potenziell infektiös betrachtet werden. Vermeiden Sie Hautkontakt mit den Reagenzien (Natriumazid als Konservierungsmittel). Das Azid in diesem Kit kann mit Blei oder Kupfer in den flussrohren reagieren und so hochexplosive Metallazide bilden. Spülen Sie während der Waschschritte den fluss gründlich mit viel Wasser, um die Metallazidbildung zu verhindern. Bitte rauchen, trinken, essen Sie nicht in Ihrem Arbeitsbereich, und verwenden Sie keine Kosmetika. Pipettieren Sie nicht mit dem Mund. Verwenden Sie Schutzkleidung und Wegwerfhandschuhe. 5. GASPARD V.J., REUTER A.M., DEVILLE J.L., VRINDTS GEVAERT Y., BAGSHAWE K.D., FRANCHIMONT P., (1980) Serum concentration of human chorionic gonadotropin and its alpha and beta subunit II Trophoblastic tumours. Clin. Endocrinol. (Oxf.), 13:219. 6. PIERCE J.G., PARSONS T.F., (1981) Glycoprotein hormones : structure and function. Annu. Rev. Biochem., 50:465. 7. MANCINI G. et al., (1992) hcg, AFP and V E 3 pattern in the 1420th weeks of Down's syndrome pregnancies. Prenatal Diagnost., 12(7):61924. 8. WHITEHEAD N. et al., (1993) Elevated material serum human chorionic gonadotropin increases the chance of adverse pregnancy outcome. Am. J. Obstet. Gynecol., 169(5):135960. XVIII. ZUSAMMENFASSUNG DES PROTOKOLLS Kalibratoren (05) Proben, Kontrollen Tracer GESAMT AKTIVITÄT (ml) KALIBRA TOREN (ml) PROBE(N) KONTROLLEN (ml) XVII. LITERATUR 1. BRAUNSTEIN G.D., RASOR J., ADLER D., DANZER H., WADE H.E., (1976) Serum chorionic gonadotropin levels throughout normal pregnancy. Am. J. Obstet. Gynecol., 126:678. 2. CHEN F., SETSUKO G., YOSHIHITO F., YUTAKA T., (1987) Radioimmunoassay of the serum free βsubunit of human chorionic gonadotropin in trophoblastic disease. J. Clin. Endocrinol. Metab., 64:313. Inkubation Trennung Waschlösung Trennung Waschlösung Trennung Gamma Counter 30 Minuten. bei Raumtemperatur mit Schütteln (400 rpm) absaugen (oder dekant.) 2,0 absaugen (oder dekant.) 2,0 absaugen (oder dekant.) 60 Sekunden messen 3. DAWOOD M.Y., SASCENA B.B., LANDESMAN R., (1977) Human chorionic gonadotropin and its subunit in hydatidiform mole and choriocarcinoma. Obstet. Gynecol., 50:172. 4. HAY D.L., (1982) Chorionic gonadotropin. Clin. Biochem., 3:35. DIAsource Katalognummer : KIP0981 KIP0984 Beipackzettelnummer: 1700467/de Nummer der Originalausgabe: 090422/1 Revisionsdatum : 20090422